VIBRIOS Y BACTERIAS COLIFORMES EN CAMARONES
BLANCOS (Litopenaeus vannamei) CULTIVADOS EN ESTANQUE COMERCIAL[1]
María Fernanda Ortega[2]; Martha de Von Chong[3]; Teresita Henríquez[4]; Rito Herrera[5]
RESUMEN
La camaronicultura es una de las actividades que más se ha intensificado en Panamá con el paso de los años,
cuyo propósito es el de satisfacer la creciente demanda; esto ha aumentado la
incidencia de enfermedades en el cultivo, provocando pérdidas económicas y
problemas de salud en los consumidores. El estudio se llevó a cabo en estanques
comerciales de cultivo de Camarón Blanco (Litopenaeus
vannamei) en Antón, Coclé, Panamá, con el objetivo de detectar la presencia
de bacterias del género Vibrio y
coliformes. Durante los muestreos de este trabajo, se recolectaron muestras de hemolinfa, hepatopáncreas, tejidos de los camarones, y se realizaron análisis
microbiológicos para identificar la presencia de Vibrio spp.
y bacterias coliformes. Además,
se analizó la calidad del agua del estanque de cultivo,
a través de parámetros fisicoquímicos y microbiológicos. Los resultados
demostraron la presencia de Vibrio spp.,
el 5% de las muestras de hemolinfa y el 14,3% de hepatopáncrea del camarón. Con respecto al recuento
de bacterias coliformes, todas las muestras cumplieron con el rango propuesto por la norma.
Los niveles de pH y temperatura del estanque se mantuvieron adecuados, sin embargo, se reportó la
presencia del género Vibrio en todas las muestras de agua analizadas.
Palabras clave: Análisis microbiológico, calidad del agua,
camaronicultura, hemolinfa, hepatopáncreas.
VIBRIOS AND COLIFORM BACTERIA IN WHITE SHRIMP (Litopenaeus vannamei)
CULTURED IN COMMERCIAL PONDS
ABSTRACT
Shrimp farming in Panama has intensified in
recent years to meet increasing market demand, potentially associated with
higher disease incidence, economic losses, and risks to consumer health. This
study was conducted in commercial white shrimp (Litopenaeus vannamei)
ponds in Antón, Coclé Province, Panama, to detect Vibrio spp. and
coliform bacteria. Samples of hemolymph, hepatopancreas, and shrimp tissues
were collected and subjected to microbiological analysis. In addition, pond
water was evaluated using physicochemical and microbiological parameters. Vibrio
spp. were detected in 5% of hemolymph samples and 14.3% of hepatopancreas
samples. Coliform counts in shrimp tissues were within the acceptable limits
established by current standards. Water quality parameters such as pH and
temperature were within suitable ranges for shrimp culture; however, Vibrio
spp. were detected in all water samples analyzed. These findings indicate the
presence of potentially pathogenic bacteria in the production environment, despite
acceptable physicochemical conditions and compliance with coliform standards in
shrimp tissues. The results highlight the importance of continuous
microbiological monitoring in commercial shrimp farming systems to support
animal health management and food safety.
Keywords: hemolymph;
hepatopancreas; microbiological analysis; shrimp farming; water quality
INTRODUCCIÓN
La Camaronicultura se ha consolidado como uno
de los sectores más dinámicos y rentables dentro de la acuicultura. Sin
embargo, el incremento en la demanda global ha impulsado la intensificación de
los sistemas de cultivo, lo cual ha favorecido la aparición de enfermedades que
generan pérdidas económicas considerables. Entre los principales países
productores de Litopenaeus vannamei
se encuentran China, Tailandia, Indonesia, Brasil, Ecuador, México, y varias
naciones de Centroamérica y el Caribe, incluida Panamá (Division, F. a. A. E.
a. P., 2010; Toledo et al., 2018).
Actualmente, la especie de camarón más
explotada a nivel mundial es el camarón blanco del Pacífico (Litopenaeus vannamei), cuya producción
genera ingresos anuales estimados en 9 billones de dólares. La presencia de
bacterias en estos organismos puede provocar enfermedades que afectan su salud,
reducen la tasa de supervivencia y aumentan la mortalidad durante el cultivo,
lo que conlleva a significativas pérdidas económicas. Además, el consumo de
camarón contaminado representa un riesgo para la salud humana, ya que puede
causar enfermedades gastrointestinales, diarreas agudas e incluso la muerte.
Esto se debe a que los cuerpos de agua marina pueden albergar una amplia
variedad de patógenos, incluyendo bacterias coliformes, Pseudomonas, Vibrio spp., así como virus y
protozoarios. Por ello, es fundamental realizar estudios en ambientes
acuáticos, ya que estos influyen directamente en la calidad sanitaria de los
productos del mar, representando un riesgo tanto para los organismos cultivados
como para la población que los consume (Chávez & Montoya, 2011).
En Panamá, el camarón
blanco del Pacífico es uno de los productos marinos más consumidos. A pesar de
su popularidad, se conoce poco sobre su calidad sanitaria, siendo probable
presente cargas bacterianas que representen un riesgo para la salud pública.
Las bacterias son los principales agentes contaminantes en la camaronicultura.
De acuerdo con la Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la
Agricultura/Organización Mundial de la Salud (FAO/OMS, 2002), existen dos
grupos de bacterias de interés sanitario: las que se consideran autóctonas del
medio acuático y aquellas introducidas por contaminación antrópica, como
desechos domésticos e industriales.
Entre las bacterias
patógenas más relevantes en productos acuáticos se encuentran Escherichia
coli, Staphylococcus aureus, Salmonella spp., Listeria spp., Aeromonas spp. y diversas especies del
género Vibrio. El grupo Coliformes, especialmente E. coli, es
ampliamente utilizado como indicador de contaminación fecal en estudios de
calidad microbiológica del agua y los alimentos (Da Silva et al., 2010).
En especies como P.
vannamei, se han aislado bacterias incluso en organismos clínicamente sanos,
en órganos internos como el hepatopáncrea y la hemolinfa. Entre las especies
más frecuentemente reportadas en la hemolinfa de P. vannamei y P.
monodon se encuentran Vibrio parahaemolyticus, V. alginolyticus,
V. fluvialis, V. fischeri, V. vulnificus y V. harveyi,
todas integrantes de la microflora marina natural (Cuéllar-Anjel, 2013).
Este estudio se realizó con
el objetivo de detectar Vibrios y bacterias coliformes en Camarón Blanco (Litopenaeus
vannamei) cultivado en estanques comerciales en Antón, Coclé, Panamá.
MATERIALES Y MÉTODOS
Descripción
del lugar de estudio
Las
muestras fueron colectadas en un estanque comercial con sistema de cultivo
intensivo de una finca camaronera dedicada a la producción y exportación de
camarón blanco (Litopenaeus vannamei),
ubicada en Río Hato, distrito de Antón, provincia de Coclé, Panamá a 8° 20' 53,524"
N 80° 9' 17,397" W (Figura 1). El trabajo experimental se llevó a cabo en
las instalaciones del Laboratorio de Microbiología y Parasitología de la
Facultad de Ciencias Naturales, Exactas y Tecnología del Centro Regional
Universitario de Coclé de la Universidad de Panamá.
Medición
de Parámetros Fisicoquímicos del agua
La medición de los parámetros fisicoquímicos
del agua del estanque de cultivo se realizó semanalmente de forma simultánea a
los muestreos. La temperatura se midió con un medidor de oxígeno disuelto con
termómetro incluido y el pH se midió utilizando un pH-metro (Figura 2).
Monitorear la temperatura y el pH del agua en
el estanque fue de crucial importancia para garantizar el bienestar y correcto
desarrollo de los camarones de cultivo, ya que la temperatura es un parámetro
fundamental en los procesos biológicos y químicos de los organismos, que se
pueden ver afectados si la temperatura en el estanque no es la adecuada. De
igual manera, el pH influye en el desarrollo, fertilidad y tasa de
supervivencia de los camarones (Paredes Mendoza & Rodríguez Romero, 2020).
Obtención
de las muestras de camarón
La recolección de las muestras de camarón se realizó
directamente del estanque, colectando los camarones al azar, utilizando una
atarraya. Semanalmente, fueron colectadas cinco muestras de camarón en etapa
adulta durante dos meses; se colectaron en total cuarenta muestras. Luego de
colectadas, las muestras fueron trasladadas al laboratorio a través de una
hielera con agua del estanque y oxígeno, así mantener con vida y libres de
estrés, posteriormente, se le realizó los análisis microbiológicos
correspondiente.
Durante el tiempo de muestreo fueron analizadas
40 muestras de camarón blanco Litopenaeus
vannamei en estado adulto, tomando cinco muestras por semana; de cada
muestra se sembraron tres réplicas en platos Petri con agar TCBS, haciendo un
total de 15 siembras por semana.
Aislamiento
de Vibrio spp. en la hemolinfa del
camarón
Para el aislamiento del género Vibrio en la
hemolinfa del camarón vivo, primero, se midieron y pesaron todos los
individuos, luego cada muestra se desinfectó meticulosamente, con alcohol al
70% y se extrajo 50 µL de hemolinfa de la región ventral del camarón con una
jeringa estéril de 1 ml (Figura 3).
La hemolinfa extraída fue sembrada
inmediatamente en platos Petri con agar Tiosulfato-Citrato-Bilis-Sacarosa
(TCBS), utilizando un asa bacteriológica estéril. Para observar el tiempo de
coagulación de la hemolinfa, se colocó una gota sobre un portaobjetos (Sánchez
& Castillo, 2009).
Las placas Petri fueron incubadas a 37° C
durante 24 horas y posteriormente se realizó la detección de Vibrios mediante
pruebas bioquímicas realizadas a las colonias que crecieron en el agar. Se
obtuvieron 15 muestras de hemolinfa por semana, tomadas de cinco camarones
adultos con peso de 22 a 48 g.
Aislamiento
de Vibrio spp. de la hepatopáncreas
del camarón:
Para realizar la extracción de la hepatopáncreas,
se utilizó el mismo individuo al que se le extrajo la hemolinfa; se desinfectó
la muestra con alcohol al 70%, luego, como se observa en la Figura 4, se
levantó la cutícula posterior del cefalotórax para extraer la hepatopáncreas,
utilizando una pinza de disección estéril, evitando romper o contaminar con
otros tejidos. La hepatopáncreas de cada camarón fue colocada en tubos de
ensayo con 10 ml de solución salina estéril al 2,5%, luego se maceró y agitó la
muestra para homogenizar los tejidos (Cuéllar-Anjel, 2013).
Se tomó 100 µl de la muestra,
utilizando una micro pipeta y se sembró en
plato Petri con agar TCBS,
utilizando la técnica de siembra por inmersión.
Una vez sembrada la muestra,
se incubó a 37°
C durante 24 horas (Sánchez
& Castillo, 2009).
Identificación
del género Vibrio a través de Pruebas Bioquímicas
Tinción
de Gram
Para determinar la presencia del género Vibrio en los camarones de cultivo, se
realizaron tinciones de Gram a colonias seleccionadas de las placas de TCBS con
crecimiento bacteriano. Se observó la existencia de bacilos Gram negativos
curvados, característicos de este género (Figura 5).
Prueba
de Catalasa
Esta prueba bioquímica se utilizó para
confirmar la presencia de la enzima Catalasa, la cual se encuentra presente en
muchas bacterias aerobias y anaerobias facultativas que tienen
citocromo-c-oxidasa. El procedimiento consistió en colocar una colonia aislada
de la muestra de bacteria sobre un portaobjetos, y luego verterle encima una
gota de peróxido de hidrógeno. La reacción de las bacterias que sintetizan la
enzima Catalasa es hidrolizar el peróxido de hidrógeno, liberándolo en forma de
burbujas (Figura 6). Los Vibrios se caracterizan por ser positivos en pruebas
de Catalasa (Fernández Olmos et al., 2010).
Prueba de
Oxidasa
Esta prueba determinó la
presencia de enzima oxidasa en los Vibrios, Aeromonas, Pseudomonas, Nisserias,
entre otros. Un microorganismo es oxidasa positiva, cuando el color de la
muestra cambia a púrpura o azul-violeta en un lapso de 5 a 10 segundos (Figura
7). Esta reacción ocurre cuando el citocromo-c-oxidasa presente en las
bacterias activa la oxidación del citocromo, el cual, es reducido por el
oxígeno que se produce en el agua o en el peróxido de hidrógeno, dependiendo de
la especie de bacteria (Fernández Olmos et al., 2010).
Siembra
de bacterias Coliformes en placas 3M™ Petrifilm
Para realizar el análisis microbiológico de
bacterias coliformes en las muestras de camarón, se utilizaron placas 3M™
Petrifilm para E. coli / Coliformes,
siguiendo las recomendaciones de la Guía de interpretación de placas 3M™
Petrifilm™ para el recuento de coliformes (3M, 2017), para Recuento de
Coliformes:
Se pesaron 10 g de tejido de cada muestra de
camarón y se colocaron en una bolsa ziploc con 90 ml de agua peptonada al 0,01%
durante 30 minutos, luego la bolsa se llevó a la Stomacher para homogenizar la
muestra durante 60 segundos.
a. Se realizaron diluciones
seriadas a partir de la muestra madre 101, para obtener las
diluciones 102 y 104.
b. Las diluciones 102
y 104 fueron sembradas por
triplicado; se colocó perpendicularmente 1 ml de cada dilución sobre placas 3M™
Petrifilm para E. coli / Coliformes y
se incubaron a 35° C durante 24 horas.
c. Una vez finalizado el tiempo de incubación de las muestras, se procedió a
realizar el conteo de colonias en cada placa de Petrifilm (Figura 8), siguiendo las recomendaciones de la guía y utilizando las Normas Microbiológicas de los Alimentos y Asimilados
(superficies, aguas diferentes de consumo, subproductos y otros Parámetros
Fisicoquímicos de Interés Sanitario) (Morgas et al., 2019).
Pruebas Microbiológicas de las muestras de agua del
estanque de cultivo de camarones
Toma
de muestra
Se tomaron del mismo estanque de cultivo donde
fueron cosechados los camarones; se extrajo el agua utilizando envases
plásticos estériles con tapa hermética, siguiendo la Metodología de Suárez et
al., 2015; las muestras fueron transportadas al laboratorio en hieleras para
preservar la calidad de la muestra y después se realizaron los análisis
microbiológicos pertinentes.
Aislamiento de Vibrio spp.
Las muestras de agua del estanque de cultivo
fueron sembradas directamente por triplicado en placas Petri con medio de
cultivo TCBS y se incubaron a 37° C durante 24 horas. Luego de finalizado el tiempo de incubación, se observó el crecimiento bacteriano en
las placas (Figura 9). Se seleccionaron colonias de bacterias de cada placa y se les realizaron pruebas bioquímicas de oxidasa y catalasa para identificar la presencia de Vibrio spp. en las muestras de agua (Suárez et al., 2015).
Bacterias
heterótrofas totales
Para realizar el recuento de bacterias
heterótrofas se utilizó Plate Count Agar (PCA), se realizaron diluciones
seriadas con agua peptonada bufferada siguiendo el método 9215 B (Heterotrophic
Plate Count) descrito por Rice et al., 2017:
a. Se tomó 0,1 ml de la muestra de agua y se colocó en
tubos de ensayo con 9,9 ml de agua peptonada para obtener las diluciones 102
y 104.
b. Se sembró 1 ml de la dilución 104 por
réplicas en placas Petri con agar PCA, utilizando la técnica de siembra por
inmersión y se incubaron a 35° C durante 7 días.
c. Como se muestra en la Figura 10, una vez terminado
el tiempo de incubación, se realizaron los conteos de colonias, utilizando las
normas propuestas por el Manual de Buenas Prácticas para el Cultivo de Camarón
Blanco Litopenaeus vannamei para los
parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del agua del estanque para la
siembra (Cuéllar-Anjel et al., 2010).
Análisis
estadísticos
Se realizaron estadísticas descriptivas,
utilizando el programa SPSS versión 28 haciendo un análisis a través de
gráficas y cuadros de la incidencia de bacterias en el camarón blanco de
consumo humano de una finca de cultivo en Antón, Coclé, Panamá.
RESULTADOS y DISCUSIÓN
Medición de Temperatura del
agua del estanque de cultivo
La temperatura del agua dentro del estanque de
cultivo de camarones se mantuvo ligeramente cambiante durante las ocho semanas
de muestreo, alcanzando su mayor valor en la semana 6 con 29,7° C. Los valores
se mantienen dentro del rango esperado en todas las semanas, cumpliendo con la
temperatura ideal para el cultivo de camarón blanco Litopenaeus vannamei (Fenucci,1988) donde se indica que nunca debe
ser inferior a los 24° C ni superior a los 32° C (Figura 11).
Medición
de pH en el estanque
El pH del agua del
estanque se midió durante las ocho semanas de muestreo. Se pudo notar la
variación del pH durante las semanas, siendo la semana 4, la que observó el
mayor valor con un pH de 8,25; por el contrario, la semana 7 mostró el menor
valor con 6,68.
Casi todas las semanas se mantienen dentro del
rango de cumplimiento obligatorio de pH para la Calidad de las Aguas en la Cría
de Moluscos propuesto por las Normas Básicas para la Acuicultura Ecológica De
Bio Latina, a excepción de la semana 7, que cae ligeramente por debajo del
límite inferior (Figura 12). Siendo estos datos importantes para el monitoreo
de la calidad del agua dentro del estanque, ya que es un factor que puede influir
directamente en el crecimiento bacteriano.
Aislamiento de Vibrio spp. en hemolinfa
del camarón
Los datos obtenidos indican que en las
semanas 1 y 2, el 20% de las muestras resultaron positivas a la presencia de
bacterias del género Vibrio, mientras
que en el 80% restante, no hubo presencia. A partir de la semana 3 no se detectó presencia de Vibrio en ninguna de las muestras de
hemolinfa del camarón; lo que señala que estas bacterias fueron detectadas en
un pequeño porcentaje de las muestras en las semanas iniciales y luego, como se
observa en la Figura 13, hubo una notable disminución que podría deberse a
intervenciones específicas para el control de esta bacteria.
Para determinar que una muestra fuera
positiva para bacterias del género Vibrio,
a cada muestra se le efectuó una tinción de Gram para verificar que las
bacterias presentes sean Bacilos Gram negativos. Además, se realizaron pruebas
bioquímicas de catalasa y oxidasa para confirmar la presencia de Vibrios; ambas
pruebas debían tener reacciones positivas.
Aislamiento de Vibrio spp. en hepatopáncreas de camarón
El aislamiento de Vibrio
spp. en hepatopáncreas evidenció variaciones temporales en su detección a lo
largo del período de muestreo. En algunas semanas se registró la presencia del
microorganismo, mientras que en otras no se detectó, lo que sugiere una
fluctuación en la colonización del tejido. Estas variaciones podrían estar
asociadas a cambios en la calidad del agua, al estado fisiológico de los
organismos o a la efectividad de las medidas de manejo y control implementadas
durante el cultivo (Figura 14).
Siembra de Bacterias coliformes
en placas 3M™ Petrifilm
Para el recuento de Bacterias coliformes se
utilizaron dos diluciones (10-2 y 10-4), para ambas se
efectuaron réplicas de muestra que, posteriormente, fueron sembradas en placas
Petri film para recuento de E. coli /
Coliformes. De los resultados conseguidos, se realizó una media para obtener el
valor promedio de cada muestra.
El recuento de bacterias coliformes evidenció
una baja carga microbiana a lo largo del período de evaluación, con variaciones
temporales en su detección. En general, los recuentos se mantuvieron en niveles
bajos, observando una mayor sensibilidad de la dilución menor para la detección
del crecimiento bacteriano. La ausencia de crecimiento en la dilución mayor en
varias semanas sugiere una baja concentración de coliformes en las muestras
analizadas. Asimismo, los valores obtenidos se mantuvieron dentro de los
límites máximos permitidos por la normativa microbiológica vigente, lo que
indica condiciones sanitarias adecuadas durante el periodo de muestreo (Figura
15).
Aislamiento de Vibrio spp.
Los resultados evidencian variabilidad en la presencia de Vibrio
spp. entre las muestras de
agua analizadas. Mientras que en los estanques n1, n2 y n3 se observó una
presencia consistente del microorganismo, en los estanques n4 y n5 la detección
fue variable, lo que sugiere una menor estabilidad o una posible influencia de factores
ambientales o de manejo que limitarían su proliferación en estas muestras
(Figura 16).
Para el recuento de
bacterias heterótrofas presentes en el agua del estanque de cultivo, se tomó
como referencia el valor propuesto por Cuéllar-Anjel et al. (2010) en el Manual
de Buenas Prácticas de Manejo para el Cultivo del Camarón Blanco Litopenaeus
vannamei (<10³ UFC/ml).
Los resultados evidencian
variaciones temporales en la carga de bacterias heterótrofas en el agua del
estanque evaluado. Durante la semana en la que se registró un recuento dentro
del rango aceptable, las condiciones del agua pudieron haber sido más
favorables para el control del crecimiento bacteriano. En contraste, en las
demás semanas se observaron recuentos superiores al valor de referencia, lo que
sugiere fluctuaciones en la calidad del agua y en las condiciones de manejo a
lo largo del periodo de evaluación (Figura 17).
Los parámetros fisicoquímicos monitoreados en
el agua se mantuvieron estables; el pH se mantuvo
relativamente constante y fueron similares a los obtenidos por
Lara-Espinoza et al. (2015) en el que se reportaron valores de 7,34 ± 0,15. La temperatura también
se mantuvo dentro
del rango esperado, siendo la adecuada para el cultivo de camarones, lo que
coinciden con los analizados por Miranda-Baeza et al. (2015)
donde obtuvieron valores de
28,95 ±2,49° C.
En un estudio realizado Gómez-Gil et al.,
2016, reportaron cargas
bacterianas que no superaban 1x103 UFC/ml
de hemolinfa, asegurando que
habitualmente se puede encontrar este tipo de bacterias en animales que aparentan estar sanos.
Siendo similares a los obtenidos
en este estudio, ya que, solo se observó la presencia de bacterias de color amarillo pertenecientes al género Vibrio en 20% de las muestras
de hemolinfa durante la semana 1 y 2.
Se detectó una mayor presencia de Vibrio en la hepatopáncreas en
comparación con los datos obtenidos en la hemolinfa del camarón. Este
descubrimiento coincide con el estudio
previo de Gómez-Gil
et al. (2001), el cual indica
que el hepatopáncrea es un órgano altamente
sensible y propenso
a adquirir infecciones bacterianas debido a sus importantes funciones
en el sistema digestivo del
camarón, ya que es el encargado de absorber los nutrientes y se encuentra
expuesto a bacterias y patógenos presentes en el alimento y el medio ambiente.
En este estudio,
obtuvimos dos tipos de colonias presentes en la hepatopáncreas del camarón:
colonias de color amarillas y de color verde. Las colonias de color verde
presentaron una mayor presencia en las muestras. Flegel et al. (2005), afirma
que cuando los camarones presentan crecimiento bacteriano de colonias verdes,
no importa si el recuento de colonias es bajo o alto, estas siempre
perjudicarán la hepatopáncreas del animal, independientemente del estadio en el
que se encuentre, ya sea larval, juvenil o adulto. Por otro lado, Gómez-Gil et
al. (2008), mencionan que es normal encontrar colonias amarillas en la
hepatopáncreas, incluso en recuentos que superan el rango máximo 105 UFC,
afirmando que estas pueden aparecer sin causar ningún problema en la salud del
animal.
En términos bacteriológicos, Farmer et al.
(2003), propuso que en cultivos realizados en agar TCBS para Vibrio, algunas especies, como: V. alginolyticus, V. fluviales, V. cholerae, V. harveyi, V.
cincinnatiensis, entre otros, son fermentadores
de sacarosa y presentan colonias de color amarillo con bordes lisos. Sin
embargo, la especie V. parahaemolyticus, no
fermenta sacarosa y sus colonias son verdes. Asimismo, Gómez-Gil et al. (2015), recalcan
la importancia de identificar la cepa de la
bacteria, puesto que se han encontrado las mismas especies de Vibrio, tanto en camarones sanos como en
enfermos.
Con respecto al análisis de bacterias
coliformes presentes en el camarón blanco, Swistock (2020), indica en su
estudio que los coliformes totales y fecales son utilizados regularmente como
indicadores de la calidad de los alimentos y el agua. La detección de bacterias
coliformes puede señalar que, probablemente, exista la presencia de otros
patógenos de origen fecal como bacterias, virus o protozoos, que pueden afectar
la salud de los camarones, causando infección o mortalidad. La incidencia de
bacterias del grupo coliforme demuestra que existe contaminación en el agua.
Esta contaminación puede deberse a las descargas de aguas residuales sin
tratamiento provenientes de viviendas humanas (Sarcos & Botero, 2005).
Se pudo observar que en el análisis para
bacterias coliformes ninguna muestra sobrepasó los límites microbiológicos
propuestos por la norma establecida, es decir, el 100% cumplió con los requerimientos establecidos. Además, no se registró
ninguna relación entre la presencia de bacterias coliformes y bacterias del género Vibrio,
como menciona Leyva Castillo et al. (2013) los Vibrios son microorganismos que
pueden vivir en cuerpos de agua parcialmente libres de contaminación fecal.
El género Vibrio
está ampliamente distribuido alrededor del mundo, y se puede encontrar en casi
cualquier agua utilizada para el cultivo de especies marinas, además, las
especies de este género cohabitan en los camarones y en otros animales de
cultivo, ya que se adentran en branquias y las cutículas de los organismos
(Peña-Navarro & Varela-Mejías, 2016).
Casi todas las muestras
de agua analizadas fueron positivas para bacterias del género Vibrio y los valores obtenidos para la
temperatura del agua estuvieron en un rango
de 24° a 32° C. Esto concuerda con Quintanilla
Corena & Castro Miranda (2022), donde observó que valores de temperatura
superiores a 20° C, pueden influir
de manera positiva,
el crecimiento de este género de bacterias. En un trabajo
previos, Suárez et al. (2015) indican que hallaron recuentos de Vibrio
entre 1,2x101y 7,4x102 UFC/mL
en muestras de agua de cultivo de camarón
blanco. También recalca
que la presencia de especies
de Vibrio durante el ciclo
de cultivo sumado a un mal manejo de control de calidad, puede comprometer negativamente la salud del camarón y afectar la producción
en la Acuicultura.
En relación con las bacterias heterótrofas en muestras de agua,
Quintanilla Corena & Castro Miranda (2022) señalan que valores de pH
cercanos a la neutralidad o en el rango alcalino favorecen el crecimiento de
este grupo bacteriano. Este comportamiento es parcialmente consistente con los
resultados del presente estudio, ya que durante la mayor parte del periodo de
muestreo el pH se mantuvo en valores neutros a ligeramente alcalinos.
Sin embargo, se registró un descenso puntual del pH hasta
valores ácidos (pH 6,6), lo cual indica una condición menos favorable para el
desarrollo de bacterias heterótrofas. En las semanas en que el pH se mantuvo en
el rango neutro–alcalino, los recuentos de bacterias heterótrofas superaron los
límites establecidos por la normativa vigente, mientras que durante el periodo
en el que el pH descendió a valores ácidos, los recuentos se mantuvieron dentro
del rango aceptable.
De manera similar, Quintanilla Corena & Castro Miranda (2022)
reportaron elevados recuentos de bacterias heterótrofas en aguas de estanques
de cultivo, llegando a describir colonias incontables y valores cuantificables
únicamente a partir de diluciones elevadas, lo que evidencia la influencia del
pH y otras condiciones ambientales en la proliferación bacteriana.
CONCLUSIONES
§
Se detectó la presencia de Vibrio spp. en las muestras de hemolinfa del camarón durante la 1era y 2da
semana. En el hepatopáncrea se detectó la presencia del género Vibrio spp. durante las semanas: 1, 3, 4 y 6. Alcanzando la mayor presencia
en la semana 5.
§
Todos los recuentos de las muestras analizadas para
coliformes en placas 3M™ Petrifilm durante
el estudio, fueron
aceptables, ninguna muestra
superó el límite máximo permisible.
§
Se detectó la presencia del género Vibrio spp. en
todas las muestras
de agua analizadas en medio de
cultivo agar TCBS. Según la norma todas las muestras se encuentran en el rango
aceptable.
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